Capacité totale des cellules: 10⁷ à 2×10⁹ cellules.
Capacité des cellules marquées: 10⁵ à 10⁸ cellules (Lors de la séparation de cellules plus grandes que les lymphocytes, la capacité de la colonne de séparation peut diminuer).
Volume vide: 1,35 ml.
Volume du réservoir: 7 ml.
Débit:Pour 1x PBS contenant 0,5 % de BSA (albumine sérique bovine) : 1,2 - 2,1 ml/min.
Plage applicable:Applicable aux échantillons d'un diamètre inférieur à 30 μm.
Stérilité:Les colonnes de séparation sont conditionnées individuellement de manière stérile.
Les colonnes de séparation MaxSortin® L sont utilisées en association avec les billes magnétiques et les tampons de tri cellulaire MaxSortin®. Elles permettent de trier délicatement les cellules liées aux billes magnétiques.
Procédures expérimentales:
1. Prenez la colonne de séparation L MaxSortin® (MS-CL01) et placez-la sur le trieur MACS (130-090-976), puis rincez-la deux fois avec 1 ml de tampon de tri cellulaire MaxSortin®.
2. Ajouter l'échantillon, incubé avec les billes magnétiques et les cellules de tri cellulaire MaxSortin®, dans la colonne de séparation L. Après écoulement naturel, ajouter le tampon de tri cellulaire en deux fois, 3 ml à chaque fois. Recueillir l'effluent dans un tube de 15 ml. Les cellules collectées sont les cellules sélectionnées négativement.
3. Une fois le tampon de tri cellulaire écoulé, retirez la colonne de séparation L du trieur MACS et placez-la dans un nouveau tube à centrifuger de 15 ml (marquez-le correctement). Ajoutez 3 ml de tampon de tri cellulaire dans la colonne de séparation L et utilisez un piston pour expulser le liquide directement. Les cellules collectées sont les cellules sélectionnées positivement.
4. Comptez les cellules et effectuez une détection par cytométrie de flux.
Ce produit est uniquement applicable à la culture cellulaire in vitro et ne peut pas être utilisé directement pour un traitement clinique.
