Gesamtzellenkapazität: 10⁷ bis 2×10⁹ Zellen.
Kapazität für markierte Zellen: 10⁵ bis 10⁸ Zellen (Beim Trennen von Zellen, die größer als Lymphozyten sind, kann die Kapazität der Trennsäule abnehmen).
Hohlraumvolumen: 1,35 ml.
Reservoirvolumen: 7 ml.
Durchflussrate: Für 1x PBS mit 0,5 % BSA (Bovine Serum Albumin): 1,2 – 2,1 ml/min.
Anwendbarer Bereich: Gilt für Proben mit einem Durchmesser von weniger als 30 μm.
Sterilität: Die Trennsäulen sind einzeln steril verpackt.
MaxSortin® L-Trennsäulen werden in Kombination mit den MaxSortin®-Magnetperlen und Zellsortierungspuffern zur Zellsortierung verwendet. MaxSortin® L-Trennsäulen ermöglichen die schonende Sortierung der an Magnetperlen gebundenen Zellen.
Experimentelle Verfahren:
1. Nehmen Sie die MaxSortin® L-Separation Column (MS-CL01), platzieren Sie sie auf dem MACS-Sorter (130-090-976) und spülen Sie sie anschließend zweimal mit 1 ml MaxSortin®-Zellsortierungspuffer.
2. Die mit MaxSortin®-Magnetperlen und Zellen zur Zellsortierung inkubierte Probe in die L-Trennsäule geben. Nach dem natürlichen Ausfluss den Zellsortierungspuffer in zwei Portionen zu je 3 ml hinzufügen. Das austretende Material in einem 15-ml-Röhrchen auffangen. Die gesammelten Zellen sind die negativ selektierten Zellen.
3. Nachdem der gesamte Zellsortierpuffer abgelaufen ist, entfernen Sie die L-Trennsäule aus dem MACS-Sortierer und setzen Sie sie in ein neues 15-ml-Zentrifugenröhrchen (kennzeichnen Sie es entsprechend). Geben Sie 3 ml Zellsortierpuffer in die L-Trennsäule und drücken Sie die Flüssigkeit mit einem Kolben direkt heraus. Die gesammelten Zellen sind die positiv selektierten Zellen.
4. Zählen Sie die Zellen und führen Sie eine Durchflusszytometrie-Erkennung durch.
Dieses Produkt ist nur für die In-vitro-Zellkultur geeignet und kann nicht direkt für die klinische Behandlung verwendet werden.
